第二节 家兔失血性休克
实验目的
（1）家兔失血性休克模型的制备并观察其表现。
（2）探讨失血性休克的发病机制。
（3）观察高晶高胶液对家兔失血性休克的疗效并探讨其机制。
实验原理
采用对家兔股动脉处快速放血的方法，10min内使MAP（平均动脉压）降至5.33 kPa（40mmHg），并维持20min，此时放血量已经达到20%以上，复制失血性休克的动物模型，利用解剖显微镜动态观察肠系膜微循环血流动力学的改变，再采用高晶高胶液进行扩容治疗，观察其对家兔失血性休克的治疗作用。
实验对象及相关用品
1.实验对象
家兔（雌雄不限，体重2.5kg左右）。
2.实验相关用品
（1）药品：3%戊巴比妥钠溶液，生理盐水，微循环灌流液（含1%明胶的台氏液），0.3%肝素钠生理盐水溶液，7.5%氯化钠与6%低分子右旋糖酐混合液（即高晶高胶液）。
（2）器材：兔手术器械1套，兔手术台，BL-420生物信号采集分析系统，压力传感器，水检压计，微循环观察装置（解剖显微镜、灌流盒），静脉输液装置，储血瓶，动脉导管和静脉导管，动脉夹，温度计，100mL烧杯，5mL、10mL、20mL注射器，止血纱布，婴儿秤。
观测指标
（1）血流动力学参数：体动脉压平均值（MAP）、脉压（Ps-d）、心率（HR）、中心静脉压（CVP）。
（2）微循环参数：微血管（微动脉、微静脉）内血流速度、微血管口径、毛细胞血管开放数目/视野、白细胞附壁及嵌塞现象。
（3）体温（测直肠温度）。
（4）皮肤及口腔黏膜颜色。
（5）呼吸。
实验分组
（1）生理盐水治疗组。
（2）高晶高胶液治疗组。
实验步骤
（1）取家兔一只，称重后静脉注射3%戊巴比妥钠溶液（1mL/kg），进行全身麻醉。
（2）将家兔仰卧固定于兔手术台上，剪去手术区被毛，在甲状软骨下做颈部正中切口（长约4cm），分离气管，做倒“T”形切口，插入“Y”形气管插管并固定，保证呼吸通畅，并将插管的一侧接呼吸描记装置，描记呼吸；分离一侧颈总动脉，插入动脉导管，经压力传感器（插管前在动脉导管和压力传感器导管部分充盈肝素，以防止凝血后堵塞血压传导通路）与BL-420生物信号采集与分析系统相连，记录MAP、Ps-d、HR。
（3）在左侧股三角区域触及股动脉后，沿动脉行走方向做长约2cm的切口，游离左股动脉后插入股动脉导管（插管前在动脉导管和储血瓶内加入约20mL肝素钠溶液，以防止凝血后堵塞放血通道），在其尖端之前用动脉夹股动脉，导管另一端与储血瓶相连，以备放血。
（4）在右侧股三角区沿动脉行走方向做一长约2cm的切口，游离右股静脉，插入长度约为40cm股静脉导管至下腔静脉入右心房处（约在剑突上1.5cm处），插入深度约20cm，导管外端接三通管，一侧同输液瓶相连后，缓缓输入生理盐水（5～8滴/分）以保持导管及静脉通畅，一侧经压力传感器与BL-420生物信号与分析系统相连，记录CVP。
（5）在剑突下方1.5cm处向下沿正中线做长约5cm的腹正中切口，沿腹白线打开腹腔，找出一段游离度较大的小肠肠袢，轻轻拉出，置于微循环灌流盒内，用解剖显微镜观察肠系膜微循环情况。
（6）将温度计插入直肠，测体温。
（7）记录各项指标后，降低储血瓶，松开动脉夹，快速从左股动脉放血，10min内使MAP降低至5.33kPa（40mmHg），并维持20min（通过改变储血瓶高度来调节血压），记录各项指标及储血瓶内血量。
（8）停止放血，从右侧股静脉导管输入高晶高胶液4mL/kg（生理盐水治疗组则输入生理盐水4mL/kg），5min注完，记录治疗后5、15、30、60min时的各项指标。
注意事项
（1）麻醉深浅要适度，过深，可严重抑制呼吸；过浅，动物疼痛挣扎，影响观察，甚至引起神经源性休克。
（2）牵拉肠袢动作要轻，以免引起严重低血压，影响休克实验。
（3）尽量减少手术出血，分离血管时，应钝性分离，切勿使用手术刀或手术剪；出血时应设法止血。
（4）所有动、静脉导管及压力传感器内均应充盈肝素生理盐水，并排尽气泡。
（5）压力传感器高度均应与心脏水平一致。
（6）观察微循环时，分清动脉、静脉及毛细血管，选好标志血管，固定视野，以保持前后观察结果一致。
实验报告要点
着重讨论失血性休克的发生、发展机制以及高晶高胶液的疗效及其机制。
思考题
1.如果采用输回原血的方法治疗本实验家兔的失血性休克，其效果如何？
2.试比较失血性休克早期与晚期的微循环的改变及治疗措施的异同？
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